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Absorbance

Indispensables pour les tests ELISA, la quantification d'acides nucléiques et le dosage de protéines. Découvrez nos lecteurs pour des mesures précises et fiables dans de nombreuses applications.

Qu'est-ce que l'absorbance ?

En général, l'absorption est un processus d'interaction entre la lumière et la matière. Lorsque la lumière touche un objet qui absorbe une partie de cette lumière, on parle d'absorbance. La lumière absorbée n'est pas perdue pour autant ; elle est transformée en chaleur ou en énergie chimique lorsque la molécule absorbante est excitée. L'absorption est un processus physique que nous rencontrons tous les jours lorsque nous voyons des couleurs : la lumière blanche, comme la lumière du soleil, contient toutes les couleurs du spectre visible. Lorsqu'elle éclaire l'herbe verte, celle-ci absorbe toutes les couleurs sauf le vert. La lumière verte est alors réémise, ce qui donne à l'herbe sa couleur.

Figure 1. a) L'absorbance se produit lorsque la lumière est absorbée par la matière. Par exemple, l'herbe absorbe toute l'énergie sauf la lumière verte, qui est réémise.

Fig. 1 : b) La couleur des plantes est donnée par la chlorophylle. Son spectre d'absorbance montre une absorption de la lumière bleue et rouge, mais pas de la partie verte de la lumière.

 

Pourquoi mesurer l'absorbance ?

En biologie et en chimie, ce principe est utilisé pour quantifier les molécules absorbantes en solution. De nombreuses biomolécules absorbent en effet des longueurs d'onde spécifiques. Les acides nucléiques et les protéines absorbent la lumière ultraviolette, la chlorophylle absorbe la lumière bleue ainsi que la lumière orange et rouge, et l'hémoglobine absorbe la lumière jaune et verte. Ces analytes peuvent être quantifiés sans autre forme de procès, du moins s'ils se trouvent dans une solution dont l'absorbance de fond est faible. Toutefois, la quantification de l'absorbance ne se limite pas à quelques molécules absorbantes. Des réactions chimiques permettent en effet de produire des molécules absorbantes destinées à la quantification. Ces réactions dépendent d'un substrat spécifique ou d'une enzyme. Par conséquent, plus la quantité de composé/enzyme présente dans l'échantillon est importante, plus le développement de la couleur (et de l'absorbance) est intense. De nombreux exemples de mesures d'absorbance sont donnés plus loin, de la mesure de la viabilité cellulaire à la concentration de protéines avec des tests de protéines.

Contexte théorique des mesures d'absorbance

Chemin de détection dans les cuvettes et les microplaques

Traditionnellement, les mesures d'absorbance sont effectuées dans une cuvette : une solution contenant un analyte dont les caractéristiques d'absorption sont connues est placée dans une cuvette. Un lecteur d'absorbance détermine alors l'absorbance en envoyant une lumière d'intensité connue à travers l'échantillon, puis en détectant l'intensité de la lumière derrière l'échantillon. La lumière qui n'a pas atteint le détecteur a été soit absorbée, soit diffusée. La partie diffusée est déterminée séparément en mesurant des blancs appropriés, puis soustraite à la valeur obtenue pour obtenir l'absorbance pure de la substance d'intérêt.

Fig. 2 : L'absorbance est mesurée en envoyant de la lumière à travers l'échantillon et en détectant la partie transmise.

 

Le résultat des mesures d'absorbance - transmission, absorbance et densité optique

La partie de la lumière qui traverse l'échantillon est appelée transmission et s'exprime principalement en pourcentage (voir la figure 2). Plus la solution contient d'analyte, plus elle absorbe de lumière et plus la transmission est faible. L'absorbance, en revanche, correspond à la partie de la lumière absorbée par l'analyte. C'est la valeur absolue du logarithme à la puissance 10 de la transmission. Voici quelques équations mathématiques et chiffres qui expliquent la transmission et l'absorbance :

Fig. 3 : Relation mathématique entre l'absorbance et la transmission.

 

Transmission : T =Iout /Iin
Absorbance : A =-log10T

 

Tableau 1 : Exemples de valeurs de transmission et d'absorbance

 

Transmission Absorbance
0,1 (ou 10 %) 1 OD
0,01 (ou 1%) 2 OD
0,001 (ou 0,1%) 3 OD

 

L'absorbance en chimie et en sciences de la vie - quantifier une substance en solution

Après avoir effectué une mesure d'absorbance, le résultat est une valeur donnée soit en transmission, soit en densité optique. Toutefois, l'objectif étant de quantifier une substance en solution, la question se pose de savoir comment convertir le signal en valeur de concentration. Il existe deux méthodes pour y parvenir : utiliser la loi de Beer-Lambert ou mesurer une courbe standard parallèlement à des échantillons de concentrations inconnues.

 

Loi de Beer-Lambert

La loi de Beer-Lambert décrit la relation entre l'absorbance, la longueur du trajet et la concentration d'une substance absorbante :

A=c*d*ε
Remplacé par c : c=A/(d*ε)

La loi de Beer-Lambert s'écrit : A = εcd, où A est l'absorbance, c la concentration, d la longueur du trajet et ε le coefficient d'extinction.

Elle indique que l'absorbance est proportionnelle à la concentration multipliée par la longueur du trajet et par le coefficient d'extinction2. La longueur du trajet correspond à la distance que la lumière doit parcourir pour traverser l'échantillon. Dans une cuvette, par exemple, ce trajet est normalisé à 1 cm. Le coefficient d'extinction est une constante spécifique à une substance absorbante et à une longueur d'onde donnée, correspondant généralement au maximum d'absorbance de la substance. Il fournit des informations sur la force avec laquelle la substance absorbe la lumière à une longueur d'onde spécifique. À titre d'exemple, le coefficient d'extinction de masse de l'albumine sérique bovine (BSA) est de 0,67 µl*cm-1*µg-1. Par conséquent, une solution de 1 µg/µl de BSA avec une longueur de trajet de 1 cm a une absorbance de 0,67 OD.

La loi de Beer-Lambert est très utile, car elle permet de quantifier les substances absorbantes sans qu'il soit nécessaire d'ajouter d'autres réactifs. Cependant, elle présente certaines limites, comme indiqué ci-dessous.

La loi de Beer-Lambert ne peut être utilisée que si

  • l'analyte doit absorber la lumière à une longueur d'onde spécifique
  • la longueur du trajet est connue
  • le coefficient d'extinction de l'analyte est connu
  • L'absorbance des réactifs tampons ne doit pas se superposer à celle de l'analyte

 

Utilisation d'une courbe standard

Si l'un de ces critères ne s'applique pas, il est possible de mesurer les analytes de manière indirecte et/ou d'utiliser une courbe standard. Les tests colorimétriques de quantification des protéines, tels que le test de Bradford, dépendent par exemple d'une substance qui augmente l'absorbance en présence de protéines. L'augmentation est mesurée dans une courbe standard contenant des concentrations connues de protéines, puis dans des échantillons, ce qui permet de calculer leur concentration.

Fig. 4 : Le ménisque d'une surface liquide modifie la longueur du trajet dans les puits d'une microplaque.

 

Comment l'absorbance est-elle détectée ?

Source de lumière

La mesure de la transmission/absorption de la lumière nécessite d'abord de la lumière. Différentes sources lumineuses peuvent être utilisées pour effectuer des mesures d'absorbance. Celles-ci diffèrent par la gamme spectrale qu'elles couvrent, par leur intensité et par la stabilité de la lumière qu'elles émettent.

Les lampes halogènes au tungstène couvrent la plage de 360 nm à plus de 1 000 nm et sont souvent utilisées en raison de leur rentabilité. Les lampes flash au xénon, quant à elles, couvrent la région spectrale de 220 à 1 000 nm et la gamme UV du spectre. Elles permettent ainsi de détecter et de quantifier les acides nucléiques (260 nm) et les protéines (280 nm). Les lecteurs de microplaques d'absorbance de la marque BMG LABTECH sont équipés d'une lampe flash au xénon pour les mesures d'absorbance, ce qui leur confère une flexibilité maximale pour mesurer n'importe quelle longueur d'onde comprise entre 220 et 1 000 nm, ou l'ensemble du spectre.

 

Échantillon

Les liquides d'intérêt sont transférés dans une cuvette ou une microplaque afin de mesurer leur absorbance. Le matériau de la cuvette et de la microplaque est toujours transparent afin d'assurer une transmission maximale de la lumière, car c'est l'absorbance de la solution qui intéresse le chercheur, et non celle du matériau. Cependant, divers matériaux sont utilisés et diffèrent d'un matériau à l'autre. Le polystyrène est le matériau le plus souvent utilisé. Il peut être modifié pour présenter des caractéristiques de liaison spécifiques, que ce soit pour la culture cellulaire ou les applications ELISA. Cependant, ils ne sont pas transmissifs dans la gamme des ultraviolets, ce qui nécessite l'utilisation de plaques spéciales en copolymère d'oléfine cyclique pour mesurer l'absorbance en dessous de 400 nm.

 

Volume de l'échantillon

Un deuxième aspect à prendre en compte est le volume d'échantillon nécessaire pour obtenir des mesures d'absorbance fiables. Les cuvettes standard nécessitent environ 4,5 ml, tandis que les cuvettes semi-micro permettent de réduire ce volume à 1,5 ml et que les cuvettes micro-volume se contentent de 70 µl. La mesure en cuvette est horizontale : la lumière est dirigée d'un côté vers l'échantillon et la lumière transmise est détectée de l'autre côté. La géométrie des cuvettes permet donc d'obtenir une longueur de trajet normalisée de 1 cm. C'est l'une des principales différences avec les mesures en microplaques, qui se déroulent verticalement (de haut en bas ou de bas en haut). La longueur du trajet varie donc également en fonction du volume de l'échantillon et il est nécessaire d'utiliser des volumes égaux pour réaliser une expérience. En outre, les effets de ménisque jouent un rôle important dans la longueur de trajet lors des mesures d'absorbance en microplaques, comme expliqué en détail dans la note explicative : Comment traiter la longueur de trajet et le ménisque dans les microplaques. Les mesures effectuées au milieu d'un puits de microplaque ont un trajet beaucoup plus court en présence d'un ménisque important qu'en l'absence de ménisque. Ceci est particulièrement important lors de l'application de la méthode de Beer-Lambert ou lorsque les ménisques varient fortement au cours d'une expérience. Dans les solutions aqueuses, il est possible de corriger les changements de longueur de trajet dus au ménisque en exploitant l'absorbance de l'eau (correction de la longueur de trajet du pic de l'eau).

Des plaques standard à 96 puits sont généralement utilisées avec des volumes d'échantillons compris entre 100 et 300 µl, ce qui correspond à une longueur de trajet d'environ 2,9 à 7,4 mm. Il peut toutefois être nécessaire de réduire encore le volume de l'échantillon sans compromettre la longueur du trajet. À cette fin, il est possible d'utiliser des plaques à demi-surface ou à densité plus élevée. Ces plaques offrent une surface de puits plus petite, mais la même hauteur que les plaques standard à 96 puits, ce qui permet d'obtenir des longueurs de trajet élevées avec des volumes plus faibles.

 

Le blanc approprié

Afin de corriger les mesures d'absorbance indésirables provenant des composants du tampon, de la plaque et des effets de diffusion de la lumière, on mesure un blanc parallèlement aux échantillons. Le blanc approprié contient tous les composants de l'essai, à l'exception de l'analyte. Inversement, un blanc constitué de PBS ou d'eau est souvent insuffisant.

Il faut accorder une attention particulière aux particules présentes dans les échantillons analysés et dans les blancs. En effet, les particules diffusent la lumière et augmentent la valeur d'absorbance mesurée, car moins de lumière atteint le détecteur. Lorsqu'elles se déplacent dans la solution, elles sont détectées lorsqu'elles bloquent le trajet de la lumière. Lorsqu'elles se déplacent hors du chemin de détection, elles ne sont pas mesurées. Ce phénomène augmente la variabilité des données d'absorbance. Si les particules ne peuvent pas être éliminées des solutions à mesurer, il est recommandé de couvrir une plus grande surface du puits de la microplaque lors de la mesure d'absorbance, une caractéristique que tous les appareils BMG LABTECH proposent pour ce type de mesure.

Fig. 5 : Les options de balayage des puits des lecteurs de microplaques BMG LABTECH réduisent la variabilité des mesures d'absorbance contenant des particules.

 

Détecteur de mesures d'absorbance

Une fois la lumière transmise par l'échantillon, il faut la détecter. Deux types de détecteurs sont couramment utilisés dans les lecteurs de microplaques: un tube photomultiplicateur (PMT) ou un spectromètre à charge couplée (CCD). Les systèmes basés sur un PMT nécessitent de sélectionner la longueur d'onde avant la détection. Pour ce faire, des filtres optiques ou des monochromateurs sélectionnent la longueur d'onde souhaitée, puis la guident vers l'échantillon. La lumière transmise de la longueur d'onde souhaitée atteint alors le PMT. Le PMT amplifie le signal de la lumière transmise et produit une tension indiquant son intensité. Pour balayer l'absorbance sur une gamme de longueurs d'onde, les systèmes basés sur un PMT utilisent un monochromateur qui sélectionne la longueur d'onde souhaitée pour chaque point du spectre et la mesure de manière séquentielle.

C'est la principale différence avec le deuxième type de détecteurs d'absorbance : le spectromètre. Ce dernier divise la lumière transmise en différentes longueurs d'onde, qui sont dirigées vers un détecteur CCD permettant de capturer l'intensité de toutes les longueurs d'onde simultanément. De cette manière, les spectres ainsi que les mesures d'une seule ou de quelques longueurs d'onde peuvent être obtenus en un temps similaire. Par exemple, les instruments BMG LABTECH utilisent des spectromètres UV/vis pour les mesures d'absorbance, qui capturent un spectre entier (220-1000 nm) en moins d'une seconde.

Fig. 6 : Un spectromètre UV/vis utilisé comme détecteur d'absorbance acquiert l'ensemble du spectre d'absorbance (220-1000) en une seule fois.

 

Pièges dans les mesures d'absorbance

Utilisation d'une mauvaise plaque

Lors de mesures dans la gamme UV, comme pour les acides nucléiques ou le NADH, il est absolument nécessaire d'utiliser des plaques transparentes aux UV. Dans le cas contraire, la mesure de l'absorbance donnera une valeur maximale pour tous les échantillons.

 

Comparaison des mesures en cuvette et en microplaque

La longueur du trajet est normalisée à 1 cm dans les cuvettes, alors qu'elle varie en fonction du volume et du format de la plaque dans les microplaques. L'absorbance mesurée dans les microplaques est donc généralement inférieure à celle de la même solution mesurée dans les cuvettes. Si des solutions aqueuses sont mesurées, il est possible de normaliser la mesure en microplaque à 1 cm en utilisant la correction de la longueur de trajet du pic de l'eau. La détermination de la longueur du trajet permet également de calculer les concentrations d'analytes à l'aide de la loi de Beer-Lambert.

 

Utilisation de volumes différents

Pour les mesures dans une microplaque, il est recommandé d'utiliser le même volume afin de générer la même longueur de trajet pour tous les échantillons. Cependant, dans le cas d'échantillons présentant un ménisque, la longueur du trajet peut être différente, même en utilisant le même volume. Pour les solutions aqueuses, la correction de la longueur de trajet du pic de l'eau peut être utilisée pour résoudre ce problème ou pour déterminer la longueur de trajet nécessaire aux calculs de Beer-Lambert.

 

Perturbation du trajet de la lumière

Tout ce qui se trouve sur son chemin augmente l'absorbance mesurée. Il peut s'agir de bulles d'air dans l'échantillon, de condensation sur le couvercle, de poussière, de rayures ou d'empreintes digitales sur le fond de la plaque. Il est donc recommandé de vérifier la plaque juste avant la mesure.

Qu'est-ce qui est généralement mesuré par l'absorbance ?

Quantification des protéines

De nombreuses mesures d'absorbance visent à déterminer la concentration de protéines en solution. Plusieurs méthodes colorimétriques sont disponibles pour déterminer la teneur en protéines d'un échantillon. Cette mesure est nécessaire pour normaliser les échantillons de protéines avant de les utiliser dans des applications en aval, telles que les western blots ou les immunoprécipitations. Dans notre article de blog "Mesure des protéines : trouver une méthode appropriée", vous trouverez des descriptions détaillées des méthodes de Bradford, de BCA et d'autres, ainsi que des conseils pour vous aider à faire votre choix.

 

Quantification des acides nucléiques

Les acides nucléiques et leurs composants présentent une absorption naturelle à 260 nm. Sans préparation d'échantillon ni procédure de coloration, les mesures d'absorbance à cette longueur d'onde permettent de déterminer rapidement et facilement la concentration d'ADN/ARN. En effectuant des mesures supplémentaires à d'autres longueurs d'onde, telles que 230 nm, 280 nm ou 340 nm, il est possible d'évaluer la pureté de l'acide nucléique.

 

ELISA

L'absorbance permet également de quantifier une protéine spécifique en solution. Une méthode très répandue est l'essai immuno-enzymatique (ELISA). En bref, un anticorps immobilisé dans le puits d'une microplaque se lie spécifiquement à la protéine d'intérêt et la capture dans la plaque. Un deuxième anticorps, également spécifique de la protéine d'intérêt, se lie à la protéine capturée et peut être reconnu par un anticorps secondaire contenant une enzyme. Par conséquent, plus l'échantillon contient de protéines d'intérêt, plus l'enzyme se fixe dans le puits de la microplaque. Un substrat converti par l'enzyme en un chromophore peut finalement être mesuré par absorption et indiquer la quantité de la protéine spécifique présente dans l'échantillon.3

 

Viabilité cellulaire

Les tests colorimétriques, qui permettent de déterminer l'état de santé des cellules, sont populaires car ils sont rapides et économiques. L'utilisation d'une microplaque permet de tester de nombreuses conditions simultanément. Les méthodes basées sur l'absorbance reposent principalement sur la capacité des cellules métaboliquement actives à réduire des substrats tels que le MTT ou la résazurine. Leurs formes réduites présentent une absorption à des longueurs d'onde spécifiques, ce qui permet de détecter l'activité métabolique d'un échantillon de cellules, une caractéristique souvent affectée par la viabilité cellulaire.4 Notre article sur la viabilité cellulaire décrit en détail les méthodes colorimétriques et autres permettant de mesurer la santé des cellules.

 

Croissance microbienne

Le mode de lecture de l'absorbance des lecteurs de microplaques et des photomètres permet de mesurer la « densité optique à 600 nm » (OD600), ce qui permet de déterminer la multiplication des bactéries et des levures. Au sens strict, ce n'est pas l'absorbance, mais la diffusion de la lumière qui est mesurée dans ce mode de mesure pour cette application. Les particules (bactéries ou levures) présentes dans les suspensions microbiennes diffusent la lumière : plus il y a de microbes dans la solution, plus la lumière diffusée est importante. Cela signifie également que moins de lumière atteint le détecteur, ce qui se traduit par une transmission mesurée plus faible. Ainsi, une absorption plus élevée est calculée pour un nombre plus important de microbes, bien que ce changement soit uniquement dû à une augmentation de la diffusion de la lumière plutôt qu'à une absorption spécifique à 600 nm.

Références

  1. UICPA, Compendium de terminologie chimique, 2e édition (le "Livre d'or") (1997). Version corrigée en ligne : (2008) "Absorbance". doi:10.1351/goldbook.A00028
  2. UICPA, Compendium de terminologie chimique, 2e édition (le "Livre d'or") (1997). Version corrigée en ligne : (2014) "Beer-Lambert law (or Beer-Lambert-Bouguer law)". doi:10.1351/goldbook.B00626
  3. Crowther, J.R. (1995). Chapitre 2 : Principes de base de l'ELISA. ELISA : Theory and Practice. Humana Press. pp. 35-62. ISBN 0896032795.
  4. Riss, T. L. (2013) Cell Viability Assays. Assay Guidance Manual. Bethesda (MD) : Eli Lilly & Company et le National Center for Advancing Translational Sciences. https://www. ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK144065/
  5. Keiran Stevenson et al. (2016) General calibration of microbial growth in microplate readers. Scientific Reports volume 6, Article number : 38828 (2016) https://doi.org/10.1038/srep38828
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